一、荧光定量 PCR 原理
荧光定量 PCR(Real-time PCR),是指在 PCR 扩增反应体系中加入荧光基团,通过对扩增反应中每一个循环产物荧光信号的实时检测,最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。
以探针法荧光定量 PCR 为例:PCR 扩增时在加入一对引物的同时加入一个特异性的荧光探针,该探针两端分别标记一个报告荧光基团和一个淬灭荧光基团。开始时,探针完整地结合在 DNA 任意一条单链上,报告基团发射的荧光信号被淬灭基团吸收,检测不到荧光信号;PCR 扩增时,Taq 酶将探针酶切降解,使报告荧光基团和淬灭荧光基团分离,从而荧光监测系统可接收到荧光信号,即每扩增一条 DNA 链,就有一个荧光分子形成,实现了荧光信号的累积与 PCR 产物形成完全同步。
传统的 PCR 进行检测时,扩增反应后需要进行染色处理及电泳分离,并且只能作定性分析,不能准确定量,易造成污染出现假阳性,使其应用受到限制。实时定量 PCR 技术不仅实现了对模板的定量,且具有灵敏度高、特异性和可靠性更好、自动化程度高和无污染的特点,使得荧光定量 PCR 逐渐取代常规 PCR。
在 PCR 扩增反应的最初数个循环里,荧光信号变化不大,接近一条直线,这样的直线即是基线,这条线是可以自动生成也可以手动设置的。之后反应会进入指数增长期,这个期间扩增曲线具有高度重复性,在该期间,可设定一条荧光阈值线,它可以设定在荧光信号指数扩增阶段任意位置上,但一般会将荧光阈值的缺省设置是 3-15 个循环的荧光信号的标准偏差的 10 倍。每个反应管内的荧光信号到达设定的阈值时所经历的循环数被称为 CT 值,这个值与起始浓度的对数成线性关系,且该值具有重现性。
Ct 值最大的意义就是用来计算目的基因的表达量,此时就有两个概念容易被提及,那就是绝对定量和相对定量,绝对定量的目的是测定目的基因在样本中的分子数目,即通常所说的拷贝数。相对定量的目的是测定目的基因在两个或多个样本中的含量的相对比例,而不需要知道它们在每个样本中的拷贝数。
Ct 值诚然可以被利用来计算这两种定量结果,但是绝对定量实验必须使用已知拷贝数的绝对标准品,必须做标准曲线。相对定量可以做标准曲线,也可以不做标准曲线。绝对标准品制作困难难以获取,实验室基本都是选择相对定量的方法来计算相对基因表达量。
二、荧光定量 PCR 中的对照
下面看看各个环节都可以使用哪些对照?
3. 内标(Internal Control,IC)内标是指在同一反应管中与靶序列共同扩增的一段非靶序列分子。内标有两种形式,一种是使用天然样品中含有的内参基因作为内标,另一种是人工添加的内标。内标的最大特点是与靶序列共同扩增,而其他的对照都是独立扩增。
内参基因通常它们在各组织和细胞中的表达相对恒定,在检测基因的表达水平变化时常用它来做参照物。内参基因通常是持家基因(house-keeping gene)因为其表达水平受环境因素影响较小,而且在个体各个生长阶段的几乎全部组织中持续表达变化很小。常用的内参基因包括 GAPDH、β-actin (BETA-actin)、18sRNA、B2M、HPRT 和 TBP 等。
内参基因的优点是与样品中的靶基因经历完全相同的处理程序,可以监控采样,运输,核酸提取和扩增的全部过程。缺点是不同物种,不同生理状态下,不同组织中的内参基因存在一定的差异。如果样品类型是口腔液,咽拭子等样品,内参基因的量很低可能导致实验不成立。如果检测的是环境样品则内参基因可能完全失效。
人工内标添加一种不会干扰靶序列扩增的人工合成的内标。现在国外的诊断试剂盒大部分都会将内标直接添加在反应液中与模板一起扩增,但是这样的内标不能监控采样,运输和核酸提取的过程。
4. 核酸提取对照可以使用内参基因,假病毒混合基质,灭活病毒混合基质来监控提取到扩增的流程。
5. 反转录对照(RT control)可以使用提取好的 RNA 内参基因,RNA 假病毒混合基质,灭活 RNA 病毒混合基质来监控反转录到扩增的流程。
无反转录对照(no-RT control)含有除反转录酶以外的所有成分。
无模板空白对照NTC 是指不含有模板(阳性模板或者阴性模板)的对照。目前的试剂盒的 NC 一般都是水或阴性缓冲液,所以 NC 等同于 NTC。其实两者有不同的作用。
荧光染料对照最常使用的是 ROX 染料,由于荧光定量 PCR 的荧光信号在每个样品孔会有微小的差异所以使用特定的 ROX 荧光染料,系统可以根据 ROX 荧光染料的信号值来校准每孔的荧光信号。
7. 质控品(Quality control, QC)
上述环节中使用的各种对照大部分是试剂厂家匹配试剂盒使用的产品,有的是实验室自制,所以整个的监控过程可能存在不够客观和独立。因此在实验室的对照设置中每次检测都建议使用第三方质控品,有条件的使用国家有证标准物质 (Reference material ,RM)。由于标准物质具有准确量值和计量溯源性,可以更准确的评估整个试验流程的准确度。
三、对照的选择
从上文可知没有一种对照是完美的,在检测中我们要根据自己的需求来进行灵活选择和搭配。笔者建议每一次检测时添加一个能对从提取到扩增环节进行监控的质控品或标准物质;每份检测样品中添加内标(如果样品种类比较多样建议使用人工内标,如果样品类型为相对固定的动物组织建议使用内参基因);扩增阳性对照,扩增阴性对照,无模板对照和 ROX 对照。有条件的添加临床阳性对照和临床阴性对照,在怀疑提取环节或者反转录环节出现问题时使用核酸提取对照和反转录对照。不定期使用仪器空白对照。
不可否认的一个事实是阳性对照可以增加实验室污染的风险。这种污染的来源一种是直接来源于扩增阳性对照的污染。对于扩增阳性对照来说通常 10000 拷贝 / 微升(CT 值约 25)是比较理想的,但是有一些试剂盒厂家的扩增阳性对照设置在 CT 值 20 以下,比大部分阳性样本都强。这么高浓度的对照给实验室带来了巨大的污染风险,原因可能仅仅是因为试剂厂家担心其阳性对照不稳定,长时间存放阳性对照降解。另一种污染来自于扩增产物的处理不当,或者实验室的设计布局不合理。
对于确诊实验,我们希望提高真阴性检出率,即提高诊断特异性。我们需要确保检测系统不出现假阳性,因此要在不同环节添加阴性对照,减少非必须的阳性对照,甚至要在样品盘的不同位置中随机插入几个阴性对照,确保实验过程中没有被污染。
四、荧光定量 PCR 的应用
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